We wszystkich postaciach klinicznych CDAD wskazane jest, jeżeli istnieje taka możliwość, zaprzestanie podawania antybiotyku, który spowodował zachorowanie, uzupełnienie niedoborów wodno-elektrolitowych i stosowanie leczenia objawowego z wyłączeniem leków przeciwperystaltycznych. Stwierdzono, że preparaty z tej grupy zwiększają ryzyko wystąpienia toksycznego rozdęcia okrężnicy i pogarszają przebieg CDAD (9-11).
Zgodnie z zaleceniami Europejskiego Towarzystwa Mikrobiologii Klinicznej i Chorób Zakaźnych (European Society of Clinical Microbiology and Infectious Diseases – ESCMID) z 2009 roku oraz Amerykańskiego Towarzystwa Epidemiologii w Opiece Zdrowotnej (Society for Healthcare Epidemiology of America – SHEA) i Amerykańskiego Towarzystwa Chorób Zakaźnych (Infectious Diseases Society of America – IDSA) z 2010 roku lekami z wyboru w leczeniu CDAD są metronidazol i wankomycyna (10, 12).
1) lekką lub umiarkowaną postać zachorowania, w których stosuje się metronidazol doustnie w dawce 3 x 0,5 g przez 10 dni (ESCMID) lub 10-14 dni (SHEA/IDSA),
2) ciężką postać zachorowania z powikłaniami, takimi jak: niedrożność jelit, posocznica, perforacja jelita grubego, toksyczne rozdęcie jelita grubego, wstrząs, w której metronidazol podawany dożylnie w dawce 3 x 0,5 g stanowi uzupełnienie leczenia wankomycyną,
3) pierwszy nawrót choroby, jeżeli przebiega w postaci lekkiej lub umiarkowanej, w którym metronidazol podaje się doustnie w dawce 3 x 0,5 g przez 10 dni (ESCMID) lub 10-14 dni (SHEA/IDSA). Zastosowanie tego leku podczas początkowego zachorowania nie stanowi przeciwwskazania do użycia go w czasie nawrotu. Nie jest wskazane podawanie metronidazolu w czasie kolejnych nawrotów ze względu na jego neurotoksyczność (9, 10).
Metronidazol posiada ograniczoną skuteczność w leczeniu CDAD. Musher i wsp. stwierdzili w grupie chorych na CDAD przyjmujących ten lek ustąpienie objawów u 78,0% badanych i nawrót choroby u 28,0% (13). Efekt leczenia metronidazolem zależy od przebiegu CDAD. Badanie przeprowadzone przez Zara i wsp. wykazało, że metronidazol jest równie skuteczny jak wankomycyna w leczeniu lekkiej postaci choroby (odpowiednio 90,0 vs 98,0% wyleczeń klinicznych, p = 0,36), ale gorszy od wankomycyny w postaci ciężkiej (odpowiednio 76,0 vs 97,0% wyleczeń klinicznych, p = 0,02) (14). Wenisch i wsp. stwierdzili zależność efektów leczenia metronidazolem od drogi jego podania. W badanej przez nich grupie chorych na CDAD śmiertelność wynosiła 7,4% wśród osób leczonych postacią doustną i 38,1% wśród pacjentów otrzymujących postać dożylną (p < 0,001) (15). Nie wykazano skuteczności dodania metronidazolu do wankomycyny w leczeniu ciężkiej postaci CDAD (57,1% wyleczeń klinicznych po monoterapii vs 65,1% po leczeniu skojarzonym, p = 0,49) (16). Niepokój wzbudziło pojawienie się szczepów Clostridium difficile (C. difficile) opornych na metronidazol. Wśród 415 izolatów zbadanych przez Peláeza i wsp. 6,3% wykazywało oporność na ten lek (17). Podłożem zmniejszonej wrażliwości lub oporności C. difficile na metronidazol może być zwiększona produkcja białka Rec A, domniemanej nitroreduktazy i regulatora wychwytu żelaza (17).
1) według zaleceń ESCMID lekką, umiarkowaną lub ciężką postać zachorowania, w których wankomycynę podaje się doustnie w dawce 4 x 0,125 g przez 10 dni. Zgodnie z rekomendacjami SHEA/IDSA antybiotyk ten przeznaczony jest do leczenia ciężkiej postaci CDAD w dawce 4 x 0,125 g podawanej doustnie przez 10-14 dni. W zachorowaniach ciężkich z powikłaniami dawka wankomycyny może być zwiększona do 4 x 0,5 g i podawana doustnie lub przez zgłębnik nosowo-żołądkowy, a w przypadku niedrożności jelit jako wlewy dorektalne. SHEA/IDSA zalecają w takiej sytuacji równoczesne podawanie wankomycyny doustnie i dorektalnie w łącznej dawce 4,0 g/dobę,
2) pierwszy nawrót choroby, w którym wankomycynę podaje się w taki sposób, jak w początkowym zachorowaniu,
3) kolejne nawroty choroby, w których wankomycynę podaje się początkowo w dawkach zalecanych w leczeniu pierwszego zachorowania, a następnie kontynuuje podawanie antybiotyku w zmniejszających się dawkach lub pulsacyjnie (9, 10).
Wankomycyna jest lekiem z wyboru w leczeniu ciężkiej postaci CDAD (14). Analizy przypadków sugerują, że dodatkowe podanie jej we wlewach dorektalnych w czasie leczenia ciężkiej postaci CDAD jest korzystne (19). Badanie przeprowadzone przez Fekety i wsp. nie potwierdziło wyższej skuteczności dawki 4 x 0,5 g wankomycyny w porównaniu z dawką 4 x 0,125 g, jednakże objęło ono małą grupę osób (20). W leczeniu drugiego i kolejnych nawrotów CDAD pulsacyjne podawanie wankomycyny okazało się skuteczniejsze niż codzienne stosowanie dawki 1,0 - < 2,0 g (14,3 vs 71,4% nawrotów odpowiednio, p = 0,02). Podobną zależność wykazano w przypadku leczenia wankomycyną w zmniejszających się dawkach (odpowiednio 31,0 vs 71,4% nawrotów, p = 0,01) (21).
Wśród stosowanych w lecznictwie od wielu lat antybiotyków i chemioterapeutyków aktywność przeciw C. difficile wykazują: kwas fusydowy, linezolid, nitazoksanid, ryfaksymina, teikoplanina i tygecyklina (22-24).
Nitazoksanid jest lekiem przeciwpierwotniakowym, który wykazuje silne działanie na bakterie beztlenowe. Najmniejsze stężenie hamujące (MIC) nitazoksanidu dla C. difficile wnosi 0,03-0,5 μg/ml (średnio 0,076 μg/ml), a najmniejsze stężenie hamujące wzrost 90% szczepów C. difficile (MIC90) – 0,125 μg/ml (24). Po podaniu doustnym lek jest szybko deacetylowany w wątrobie do tizoksanidu, który również wykazuje aktywność przeciw C. difficile, a następnie sprzęgany z kwasem glukuronowym i wydalany z moczem oraz kałem (odpowiednio 31,5 i 66,2% podanej dawki) (25). W randomizowanym badaniu z podwójną ślepą próbą nitazoksanid okazał się przynajmniej tak skuteczny jak metronidazol w leczeniu CDAD (26). Podobnie wyniki randomizowanego badania z podwójną ślepą próbą, przeprowadzonego na małej grupie chorych z CDAD, wskazały na porównywalną z wankomycyną skuteczność nitazoksanidu (27).
1. Pèpin J, Valiquette L, Alary ME et al.: Clostridium difficile-associated diarrhea in a region of Quebec from 1991 to 2003: a changing pattern of disease severity. Can Med Assoc J 2004; 171: 466-472.
2. McDonald LC, Owings M, Jernigan DB: Clostridium difficile infection in patients discharged from US short-stay hospitals, 1996-2003. Emerg Infect Dis 2006; 12: 409-415.
3. Kuijper EJ, Coignard B, Tull P et al.: Emergence of Clostridium difficile-associted disease in North America and Europe. Clin Microbiol Infect 2006; 12(suppl. 6): 2-18.
4. Clements AA, Magalhães RJS, Tatem AJ et al.: Clostridium difficile PCR ribotype 027: assessing the risk of further worldwide spread. Lancet Infect Dis 2010; 10: 395-404.
5. Pituch H, Bakker D, Kuijper E et al.: First isolation of Clostridium difficile PCR-ribotype 027/toxinotype III in Poland. Pol J Microbiol 2008; 57: 267-268.
6. Merrigan M, Venugopal A, Mallozzi M et al.: Human hypervirulent Clostridium difficile strains exhibit increased sporulation as well as robust toxin production. J Bacteriol 2010; 192: 4904-4911.
7. Karas JA, Enoch DA, Aliyu SH: A review of mortality due to Clostridium difficile infection. J Infect 2010; 61: 1-8.
8. Brown KA, Khanafer N, Daneman N, Fisman DN: Meta-analysis of antibiotics and the risk of community-associated Clostridium difficile infection. Antimicrob Agents Chemother 2013; 57: 2326-2332.
9. Debast SB, Bauer MP, Kuijper EJ: European Society of Clinical Microbiology and Infectious Diseases: update of the treatment guidance document for Clostridium difficile infection. Clin Microbiol Infect 2014; 20 (suppl. 2): 1-26.
10. Cohen SH, Gerding DN, Johnson S et al.: Clinical practice guidelines for Clostridium difficile infection in adults: 2010 update by the Society for Healthcare Epidemiology of America (SHEA) and the Infectious Diseases Society of America (IDSA). Infect Control Hosp Epidemiol 2010; 31: 431-455.
11. Kato H, Kato H, Nakamura M, Nakamura A: A case of toxic megacolon secondary to Clostridium difficile-associated diarrhea worsened after administration of an antimotility agent and molecular analysis of recovered isolates. J Gastroenterol 2007; 42: 507-512.
12. Bauer MP, Kuijper EJ, van Dissel JT: European Society of Clinical Microbiology and Infectious Diseases (ESCMID): treatment guidance document for Clostridium difficile infection (CDI). Clin Microbiol Infect 2009; 15: 1067-1079.
13. Musher DM, Aslam S, Logan N et al.: Relatively poor outcome after treatment of Clostridium difficile colitis with metronidazole. Clin Infect Dis 2005; 40: 1586-1590.
14. Zar FA, Bakkanagari SR, Moorthi KM, Davis MB: A comparison of vancomycin and metronidazole for the treatment of Clostridium difficile-associated diarrhea, stratified by disease severity. Clin Infect Dis 2007; 45: 302-307.
15. Wenisch JM, Schmid D, Kuo HW et al.: Prospective observational study comparing three different treatment regimes in patient with Clostridium difficile infection. Antimicrob Agents Chemother 2012; 56: 1974-1978.
16. Bass SN, Bauer SR, Neuner EA, Lam SW: Comparison of treatment outcomes with vancomycin alone versus combination therapy in severe Clostridium difficile infection. J Hosp Infect 2013; 85: 22-27.
17. Peláez T, Alcalá R, Alonso M et al.: Reassessment of Clostridium difficile susceptibility to metronidazole and vancomycin. Antimicrob Agents Chemother 2002; 46: 1647-1650.
18. Chong PM, Lynch T, McCorrister S et al.: Proteomic analysis of NAP1 Clostridium difficile clinical isolate resistant to metronidazole. PLoS ONE 2014; 9: e82622.
19. Apisarnthanarak A, Razavi B, Mundy LM: Adjunctive intracolonic vancomycin for severe Clostridium difficile colitis: case series and review of the literature. Clin Infect Dis 2002; 35: 690-696.
20. Fekety R, Silva J, Kauffman C et al.: Treatment of antibiotic-associated Clostridium difficile colitis with oral vancomcin: comparison of two dosage regimens. Am J Med 1989; 86: 15-19.
21. McFarland LV, Elmer GW, Surawicz CM: Breaking the cycle: treatment strategies for 163 cases of recurrent Clostridium difficile disease. Am J Gastroenterol 2002; 97: 1769-1775.
22. Norèn T, Wullt M, Åkerlund T et al.: Frequent emergence of resistance in Clostridium difficile during treatment of C. difficile-associated diarrhea with fusidic acid. Antimicrob Agents Chemother 2006; 50: 3028-3032.
23. Citron DM, Merriam CV, Tyrrell KL et al.: In vitro activities of ramoplanin, teicoplanin, vancomycin, linezolid, bacitracin, and four other antimicrobials against intestinal anaerobic bacteria. Antimicrob Agents Chemother 2003; 47: 2334-2338.
24. Hecht DW, Galang MA, Sambol SP et al.: In vitro activities of 15 antimicrobial agents against 110 toxigenic Clostridium difficile clinical isolates collected from 1983 to 2004. Antimicrob Agents Chemother 2007; 51: 2716-2719.
25. Broekhuysen J, Stockis A, Lins RL et al.: Nitazoxanide: pharmacokinetics and metabolism in man. Int J Clin Pharmacol Ther 2000; 38: 387-394.
26. Musher DM, Logan N, Bressler AM et al.: Nitazoxanide for the treatment of Clostridium difficile colitis. Clin Infect Dis 2006; 43: 421-427.
27. Musher DM, Logan N, Bressler AM et al.: Nitazoxanide versus vancomycin in Clostridium difficile infection: a randomized, double-blind study. Clin Infect Dis 2009; 48: e41-64.
28. Jiang Z-D, Ke S, Palazzini E et al.: In vitro activity and fecal concentration of rifaximin after oral administration. Antimicrob Agents Chemother 2000; 44: 2205-2206.
29. O’Connor JR, Galang MA, Sambol S et al.: Rifampin and rifaximin resistance in clinical isolates of Clostridium difficile. Antimicrob Agents Chemother 2008; 52: 2813-2817.
30. Curry SR, Marsh JW, Shutt KA et al.: High frequency of rifampin resistance identified in an epidemic Clostridium difficile clone from a large teaching hospital. Clin Infect Dis 2009; 48: 425-429.
31. Johnson S, Schriever C, Galang M et al.: Interruption of recurrent Clostridium difficile-associated diarrhea episodes by serial therapy with vancomycin and rifaximin. Clin Infect Dis 2007; 44: 846-848.
32. Johnson S, Schriever, Patel U C et al.: Rifaximin redux: treatment of recurrent Clostridium difficile infections with rifaximin immediately post-vancomycin treatment. Anaerobe 2009; 15: 290-291.
33. Mattila E, Arkkila P, Mattila PS et al.: Rifaximin in the treatment of recurrent Clostridium difficile infection. Aliment Pharmacol Ther 2013; 37: 122-128.
34. Garey KW, Ghantoji SS, Shah DN et al.: A randomized, double-blind, placebo-controlled pilot study to assess the ability of rifaximin to prevent recurrent diarrhoea in patients with Clostridium difficile infection. J Antimicrob Chemother 2011; 66: 2850-2855.
35. http://clinicaltrials.gov/ct2/show/NCT01670149?term=NCT+01670149&rank=1.
36. Baines SD, Saxton K, Freeman J et al.: Tigecycyline does not induce proliferation or cytotoxin production by epidemic Clostridium difficile strains in a human gut model. J Antimicrob Chemother 2006; 58: 1062-1065.
37. Herpers BL, Vlaminckx B, Burkhardt O et al.: Intravenous tigecycline as adjuncive or alternative therapy for severe refractory Clostridium difficile infection. Clin Infect Dis 2009; 48: 1732-1735.
38. Kopterides P, Papageorgiou C, Antoniadou A et al.: Failure of tigecycline to treat severe Clostridium difficile infection. Anesth Intensiv Care 2010; 38: 755-758.
39. www.ema.europa.eu/docs/pl_PL/document_library/EPAR_-_Product_Information/human/002087/WC500119705.pdf.
40. http://www.fda.gov/downloads/AdvisoryCommittees/CommitteesMeetingMaterials/Drugs/Anti-InfectiveDrugsAdvisoryCommittee/UCM249354.pdf.
41. http://www.ema.europa.eu/docs/en_GB/document_library/EPAR_-_Public_assessment_report/human/002087/WC500119707.pdf.
42. Artsimovitch I, Seddon J, Sears P: Fidaxomicin is an inhibitor of the initiation of bacterial RNA synthesis. Clin Infect Dis 2012; 55 (suppl. 2): 127-131.
43. Babakhani F, Bouillaut L, Gomez A et al.: Fidaxomicin inhibits spore production in Clostridium difficile. Clin Infect Dis 2012; 55 (suppl. 2): 162-169.
44. Babakhani F, Bouillaut L, Sears P et al.: Fidaxomicin inhibits toxin production in Clostridium difficile. J Antimicrob Chemother 2013; 68: 515-522.
45. Sears P, Crook DW, Louie TJ et al.: Fidaxomicin attains high fecal concentrations with minimal plasma concentrations following oral administration in patients with Clostridium difficile infection. Clin Infect Dis 2012; 55 (suppl. 2): 116-120.
46. Louie TJ, Cannon K, Byrne Bet al.: Fidaxomicin preserves the intestinal microbiome during and after treatment of Clostridium difficile infection (CDI) and reduces both toxin reexpression and recurrence of CDI. Clin Infect Dis 2012; 55 (suppl. 2): 132-142.
47. Iarikov DE, Alexander J, Nambiar S: Hypersensitivity reactions associated with fidaxomicin use. Clin Infect Dis 2014; 58: 537-539.
48. Cornely OA, Crook DW, Esposito R et al.: Fidaxomicin versus vancomycin for infection with Clostridium difficile in Europe, Canada, and the USA: a double-blind, non-inferiority, randomised controlled trial. Lancet Infect Dis 2012; 12: 281-289.
49. Louie TJ, Miller MA, Mullane KM et al.: Fidaxomicin versus vancomicin for Clostridium diffficile infection. N Engl J Med 2011; 364: 422-431.
50. Cornely OA, Miller MA, Louie TJ et al.: Treatment of first recurrence of Clostridium difficile infection: fidaxomycin versus vancomycin. Clin Infect Dis 2012; 55 (suppl. 2): 154-161.
51. Rashid M-U, Lozano HM, Weintraub A et al.: In vitro activity of cadazolid against Clostridium difficile strains isolated from primary and recurrent infections in Stockholm, Sweden. Anaerobe 2013; 20: 32-35.
52. Locher HH, Caspers P, Bruyère T et al: Investigations of the mode of action and resistance development of cadazolid, a new antibiotic for treatment of Clostridium difficile infections. J Antimicrob Chemother 2014; 58: 901-908.
53. Locher HH, Seiler P, Chen X et al.: In vitro and in vivo antibacterial evaluation of cadazolid, a new antibiotic for treatment of Clostridium difficile infections. J Antimicrob Chemother 2014; 58: 892-900.
54. Chilton CH, Crowther GS, Baines SD et al.: In vitro activity of cadazolid against clinically relevant Clostridium difficile isolates and in an in vitro gut model of a C. difficile infection. J Antimicrob Chemother 2014; 69: 697-705.
55. Baldoni D, Gutierrez M, Timmer W et al.: Cadazolid, a novel antibiotic with potent activity against Clostridium difficile: safety, tolerability and pharmacokinetics in healthy subjects following single and multiple oral doses. J Antimicrob Chemother 2014; 69: 706-714.
56. Leeds JA, Sachdeva M, Mullin S et al.: Mechanism of action of and mechanism of reduced susceptibility to the novel anti-Clostridium difficile compound LFF571. Antimicrob Agents Chemother 2012; 56: 4463-4465.
57. Debast SB, Bauer MP, Sanders IM et al.: Antimicrobial activity of LFF571 and three treatment agents against Clostridium difficile isolates collected for a pan-European survey in 2008: clinical and therapeutic implications. J Antimicrob Chemother 2013; 68: 1305-1311.
58. Trzasko A, Leeds JA, Praestgaard J et al.: Efficacy of LFF571 in a hamster model of Clostridium difficle infection. Antimicrob Agents Chemother 2012; 56: 4459-4462.
59. Ting LSL, Praestgaard J, Grunenberg N et al.: A first-in-human, randomized, double-blind, placebo-controlled, single- and multiple-ascending oral dose study to assess the safety and tolerability of LFF571 in healthy volunteers. Antimicrob Agents Chemother 2012; 56: 5946-5951.
60. Bouza E, Burillo A: Oritavancin: a novel lipoglycopeptide active against Gram-positive pathogens including multiresistant strains. Inter J Antimicrob Agents 2010; 36: 401-407.
61. O’Connor R, Baines SD, Freeman J et al.: In vitro susceptibility of genotypically distinct and clonal Clostridium difficle strains to oritavancin. J Antimicrob Chemother 2008; 62: 762-765.
62. Baines SD, O’Connor R, Saxton K et al.: Comparison of oritavancin verus vancomycin as treatments for clindamycin-induced Clostridium difficile PCR ribotype 027 infection in a human gut model. J Antimicrob Chemother 2008; 62: 1078-1085.
63. Chilton CH, Freeman J, Baines SD et al.: Evaluation of the effect of oritavancin on Clostridium difficile spore germination, outgrowth and recovery. J Antimicrob Chemother 2013; 68: 2078-2082.
64. Freeman J, Marquis M, Crowther GS et al.: Oritavancin does not induce Clostridium difficile germination and toxin production in hamsters or a human gut model. J Antimicrob Chemother 2012; 67: 2919-2926.
65. Goldstein EJC, Citron DM, Sears P et al.: Comparative in vitro activities of SMT19969, a new antimicrobial agent, against Clostridium difiicile and 350 Gram-positive and Gram-negative aerobic and anaerobic intestinal flora isolates. Antimicrob Agents Chemother 2013; 57: 4872-4876.
66. Weiss WJ, Vickers R, Pulse M et al.: Efficacy of SMT19969 and SMT21829 in a hamster model of Clostridium difficile associated disease (CDAD). Abstr. B-1195. Abstr. 51st Intersci. Conf. Antimicrob. Agents Chemother, 17-20 September 2011, Chicago.
67. Mascio CTM, Mortin LI, Howland KT et al.: In vitro and in vivo characterization of CB-183,315, a novel lipopeptide antibiotic for treatment of Clostridium difficile. Antimicrob Agents Chemother 2012; 56: 5023-5030.
68. Citron DM, Tyrrell KL, Merriam CV, Goldstein EJ: In vitro activities of CB-183,315, vancomycin, and metronidazole against 556 strains of Clostridium difficile, 445 other intestinal anaerobes, and 56 Enterobacteriaceae species. Antimicrob Agents Chemother 2012; 56: 1613-1615.
69. Patino H, Louie T, Howland KT: Efficacy and safety of the lipopeptide CB--183,315 for the treatment of Clostridium difficile infection. Abstr. K-205a. Abstr. 51st Intersci. Conf. Antimicrob. Agents Chemother., 17-20 September 2011, Chicago.
70. Surawicz CM, McFarland LV, Greenberg RN et al.: The search for a better treatment for recurrent Clostridium difficile disease: use of high-dose vancomycn combined with Saccharomyces boulardii. Clin Infect Dis 2000; 31: 1012-1017.
71. McFarland LV Surawicz CM, Greenberg RN et al.: A randomized placebo-controlled trial of Saccharomyces boulardii in combination with standard antibiotics for Clostridium difficile disease. JAMA 1994; 271: 1913-1918.
72. Pillai A, Nelson R: Probiotics for treatment of Clostridium difficile-associated colitis in adults. Cochrane Database Syst Rev 2008; 1: CD004611.
73. Eiseman B, Silen W, Bascom G, Kauvar A: Fecal enema as an andjunct in the treatment of pseudomembranos eneterocolitis. Surgery 1958; 44: 854-859.
74. Vecchio AL, Cohen MB: Fecal microbiota transplantation for Clostridium difficile infection: benefits and barriers. Curr Opin Gastroenterol 2014; 30: 47-53.
75. Manges AR, Labbe A, Loo VG et al.: Comparative metagenomic study of alterations to the intestinal microbiota and risk of nosocomial Clostridium difficile-associated disease. J Intect Dis 2010;202: 1877-1884.
76. Broecker F, Kube M, Klumpp J et al.: Analysis of the intestinal microbiome of a recovered Clostridium difficile patient after fecal transplantation. Digestion 2013; 88: 243-251.
77. van Nood E, Vrieze A, Nieuwdorp M et al.: Duodenal infusion od donor feces for recurrent Clostridium difficile. N Engl J Med 2013; 368: 407-415.
78. http://clinicaltrials.gov/ct2/show/NCT01372943?term=fecal+transplantation&rank=27.
79. Gough E, Shaikh H, Manges AR: Systematic review of intestinal microbiota transplantation (fecal bacteriotherapy) for recurrent Clostridum difficile infection. Clin Infect Dis 2011; 53: 994-1002.
80. Brandt LJ, Aroniadis OC, Mellow M et al.: Long-term follow-up of colonoscopic fecal microbiota transplant for recurrent Clostridium difficile infection. Am J Gastroenterol 2012; 107: 1079-1087.
81. Lamontagne F, Labbè A-C, Haeck O et al.: Impact of emergency colectomy on survival of patients with fulminant Clostridium difficile colitis during an epidemic caused by a hypervirulent strain. Ann Surg 2007; 245: 267-272.
82. Neal MD, Alverdy JC, Hall DE et al.: Diverting loop ileostomy and colonic lavage an alternative to total abdominal colectomy for the treatment of severe complicated Clostridium difficile associated disease. Ann Surg 2011; 254: 423-429.
83. Abougergi MS, Kwon JH: Intravenous immunoglobulin for the treatment of Clostridim difficile infection: a review. Dig Dis Sci 2011; 56: 19-26.
84. Leav BA, Blair B, Leney M et al.: Serum anti-toxin B antibody correlates with protection from recurrent Clostridium difficle infection (CDI). Vaccine 2010; 28: 965-969.
85. Lowy I, Molrine DC, Leav BA et al.: Treatment with monoclonal antibodies against Clostridium difficile toxins. N Engl J Med 2010; 362: 197-205.
86. Sougioultzis S, Kyne L: Clostridium difficile toxoid vaccine in recurrent C. difficile-associated diarrhea. Gastroenterology 2005; 128: 764-770.